Embryonale Entwicklung bei Fischen (mit Diagramm)

In diesem Artikel werden wir über die Entwicklung der Fische diskutieren.

Die Embryonalentwicklung beginnt mit dem Eindringen der Spermien in das Ei. Der Prozess wird als Imprägnierung bezeichnet. Das Sperma gelangt durch Mikropyle in das Ei. Bei einigen Fischen ist die Mikropyle trichterförmig. Sobald Spermien eindringen, kommt es zu einer kortikalen Reaktion, die das weitere Eindringen der Spermien verhindert.

Selbst in Fällen, in denen Polyspermie auftritt, verschmilzt nur ein Sperma mit dem Eikern. Nach Beendigung der Kortikalreaktion wird die Vitellinmembran als Düngermembran bezeichnet.

Die Befruchtung in Teleost erfolgt äußerlich und findet außerhalb des Körpers in Wasser statt. In diesen Eiern findet also Wasserhärtung statt, wenn die Wasseraufnahme abgeschlossen ist, ist das Ei plapp. Die Gameten der Fische haben die Befruchtungsfähigkeit, auch wenn sie den Körper verlassen haben.

Die Fähigkeit könnte künstlich aufrechterhalten werden, indem moderne Kryokonservierungstechniken verwendet werden, dh durch Tiefgefrieren bei -196 ° C. Die Erhaltung von Gameten wird bei der Zucht von Fischen helfen und auch zur Verbesserung des Bestands für den Markt und zu selektiven Zwecken beitragen.

Unter den Elasmobranchen sind 12 Familien von Squaliformes vollständig vivipar, 2 sind ovipar und 2 sind gemischt. Der Plattfisch, Squalus canicula, ist eiförmige Art, die geschältes Ei legt. Latimeria chalumnalis, der einzige lebende Vertreter der Lappenfischfische, Coelocanthine, enthält ein starkes Weibchen. Jeder hat einen großen Dottersack ohne erkennbare Verbindung zur umgebenden Eileiterwand.

Während der Befruchtung vereinigen sich die Vorkerne von Sperma und Eizelle mit der Fusion von Zytoplasma. In diesem Stadium enthält das Ei Eigelb in der Mitte und Zytoplasma nimmt die Peripherie ein.

Die Menge an Zytoplasma ist etwas größer, wenn das Eikernmaterial vorhanden ist. Das Zytoplasma ist in Cyprinus carpio vollständig vom Eigelb getrennt. Ophiocephalus punctatus und Gasterosteus aculeatus. Die Vitellinmembran ist zweischichtig.

Fischspermien sind in Kopf, Mittelstück und Schwanz teilbar (Abb. 21.1ag). Den Teleostspermatozoen fehlt die Kopfkappe, das Akrosom. Die holostäischen Spermatozoen haben auch kein Akrosom. Die Fische, bei denen der Kopf im Sperma vorhanden ist, die Köpfe sind oft eiförmig und das Mittelstück ist klein. Der Schwanz ist relativ lang und enthält Mikrotubuli und bildet ein Zytoskelettgerüst.

Die Mikrotubuli haben eine 9 + 2-Anordnung (Abb. 21.2). Einige Forscher in Anguilliformes und Elopiformes haben jedoch berichtet, dass der zentrale Mikrotubulus ein 9 + 0-Muster aufweist. Bei viviparen Fischen sind Kopf und Mittelstück länglich.

Das Mittelstück enthält eine beträchtliche Anzahl von Mitochondrien wie in Poe cilia reticulata. Biflagellat-Zellen werden in Porichthys notatus und Ectalurus punctatus und Poecilia retulata gefunden. Die Beweglichkeit der Spermien ist aufgrund von Lyse bei Süßwasser-Laichern auf Sekunden von Minuten begrenzt. Beim Salzwasserspawner ist die Beweglichkeit erheblich länger. Es ist 15 Minuten im Kabeljau oder mehrere Tage im Hering.

Es besteht kein Zweifel, dass K ⁺ -Ionen aus Samenplasma die Motilität blockieren und die Beweglichkeit der Spermatozoen in geeigneten physiologischen Lösungen durch Kontrolle des pH-Werts und der Verdünnung von K ⁺ und geeigneten Fischringers-Lösungen erhöht werden kann. Diese Technik wird bei der Konservierung der Spermatozoen (Kryokonservierung) eingesetzt.

Struktur der Eizelle:

Das Ei ist von einer harten Schicht umgeben, die als Chorion bezeichnet wird. Neben Chorion befindet sich die Plasma- oder Vitellinmembran oder das Pellicle. Diese Schicht umgibt das Eigelb und das Zytoplasma (Ooplasma). Das Eigelb ist in Lungenfischen, Neoceratodus und Lepidosiren in beträchtlicher Menge vorhanden.

Die Menge an Eigelb ist bei knorpeligen Fischen wie Acipenser höher. Eigröße und Eigelbgehalt sind unabhängige Variablen. Das Chorion von Teleostfischen entsteht vollständig aus Eizellen und besteht aus Proteinen und Polysaccharid.

Die unbefruchteten Teleost-Eier sind im Allgemeinen undurchsichtig und schwerer als Wasser. Laut Swarup (1958) sind die Eier der frisch gefangenen Weibchen hellorange, aber wenn der weibliche Stichling zuvor im Aquarium gehalten und mit Tubifex gefüttert wurde, sind sie farblos. Die Eier von Cyprinus carpio sind gelb.

Die Eier einiger kultivierbarer Fischarten werden als nicht schwimmend und schwimmend eingestuft. Die nicht schwimmenden Eier sind weiterhin als nicht klebend und klebbar teilbar. Die Eier von Catla catla sind hellrot, Cirrhinus mrigala sind bräunlich und Labeo rohita sind rötlich, aber die Eier von Labeo calbasu sind bläulich. Diese Eier sind nicht schwimmend und nicht klebend.

Die Eier von Clarias batrachus und Heteropneustes fossilis sind klebend und nicht filamentös und grün gefärbt. Die Eier von Notopterus notoptorus und Notopterus chitala sind gelblich. Die schwimmenden Eier sind von Channa punctatus und C. striatus. Ihre Farbe ist Bernstein.

Befruchtete Eier:

Die befruchteten Eier werden nach und nach transparenter und die Vitellinmembran trennt sich vom eigentlichen Ei und entwickelt einen Raum, den sogenannten Perivitellinraum, der mit Flüssigkeit gefüllt ist (Abb. 21.3a).

Bildung der Blastodisc:

Unmittelbar nach der Befruchtung strömt das an der Peripherie vorhandene Zytoplasma in Richtung des Bereichs, in dem das Sperma wahrscheinlich in das Ei gelangt ist. Die Akkumulation von Zytoplasma ist auf die Kontraktionswelle zurückzuführen, die sich im Pflanzenpol befindet, durch den Äquator und am Tierpol verläuft. Die Polarität ist zu diesem Zeitpunkt festgelegt.

Der Abschluss eines Kontraktionszyklus dauert etwa 2 Minuten. Etwa zwanzig dieser Zyklen folgen aufeinander, wobei jeder Zyklus mehr und mehr Zytoplasma am tierischen Pol hinzufügt und bald eine kappenartige Struktur, die Blastodermkappe oder Blastodisk bildet (Abb. 21.3b).

Die Blastoscheibe in Teleost ist Scheibenform. Die meisten Eier haben zwei Hauptregionen, ein Zentrum, das gegenüber Zentrifugation relativ stabil ist, und ein Endoplasma, das verschiebbar ist und Eigelb und andere Einschlüsse enthält.

Spaltung:

Die weitere Entwicklung in großen Teleostern ist nahezu identisch, gefolgt von der Spaltung. Das Teleostei hat Blastoderm in Form einer Blastodisc, die Spaltung ist meroblastisch, dh, auf Blastodisc beschränkt, ist die gesamte Zygote nicht geteilt.

Die Segmentierung beginnt 1 bis 1 3/4 Stunden nach der Befruchtung. Die Faktoren, die die Spaltung bewirken, sind vielfältig, aber die wichtigsten Änderungen sind die Orientierung der Kernspindel und die sichtbare Viskosität. Sie sind parallel und auf beiden Seiten der zweiten Spaltebene und rechtwinklig zu der ersten und dritten Ebene. Auf diese Weise werden 16 Zellen gebildet (Abb. 21.3f).

32-Zellen-Stadium:

Das 16-Zellen-Stadium wird weiter unterteilt, aber die Spaltfurchen sind von nun an sowohl horizontal als auch vertikal. Die vier zentralen Zellen sind durch eine horizontale Unterteilung in 8 Zellen unterteilt, die in zwei Schichten von jeweils vier Zellen angeordnet sind.

Mit Ausnahme der vier Coiner-Zellen, bei denen die Unterteilung mehr oder weniger diagonal ist, sind die übrigen Zellen durch die vertikale Unterteilung unterteilt. Diese sind entweder parallel zur ersten oder zur zweiten Spaltfurche. Auf diese Weise wird das 32-Zellen-Stadium gebildet.

Frühe Morula:

Am Ende der Spaltung bildet sich ein Zellballen der Morula. Die von den Zellen der frühen Morula eingenommene Gesamtfläche entspricht in etwa der der ursprünglichen Blastodermscheibe (Abb. 21.3g). Die oberflächliche Ansicht des Eies mit der Spaltung und Bildung der Morula ist in Diagrammen dargestellt (Abb. 21.4 AK, AF).

Späte Morula:

Die Zellen der Morula teilen sich weiter und werden kleiner. In einer Seitenansicht erscheint dieses Stadium als eine Masse von Zellen mit hervorstehender hemisphärischer Projektion und der konvexen Basis, die in der hohlen Konkavität des Eigelbs ruht (Abb. 21.3h). Eine große Anzahl von Ölgranulaten gelangt aus der Zellmasse in das Eigelb, wo sie sich zu größeren Kügelchen zusammenfügen.

Die Zellen der Morula lösen sich und werden unter leichtem Druck voneinander getrennt. Eine syncytiale Schicht wird zwischen Eigelb und der konvexen Basis der Zellmasse gebildet. Dieses Syncytium heißt Periblast. Spaltungen führen zur Bildung von zwei Arten von Zellen, Blastoderm oder Periblast.

Die Blastodermzellen sind verschieden und produzieren den Embryo. Die Periblasten- oder Trophoblastenzellen liegen zwischen dem Dotter und den Zellen des Blastoderms und bedecken die gesamte Dottermasse, die von den am wenigsten marginalen und am weitesten entfernten Blastomeren herrühren. Diese Synzytialschicht hilft bei der Mobilisierung von Eigelbreserven.

Die Kerne entstehen am Rand des Blastoderms aus der Teilung der marginalen Zellkerne, wobei jeder entstehende Kern in das geteilte Eigelbprotoplasma oder den Periblast gezogen wird. Der Periblast ist synzytial, dh mehrkerniges Zytoplasma.

Diese Kerne ähneln den Kernen der Blastomere. Da Spindel, Astern und Chromosomen beobachtet wurden, wird der Schluss gezogen, dass sie sich mitotisch teilen. Gemäß dem Beer'schen Gesetz wäre die prozentuale Transmission eines Kerns umgekehrt proportional zur Anzahl der absorbierenden Moleküle in diesem Kern, und die Beziehung wäre eher logarithmisch als linear.

Blastula:

Durch die Spaltungen oder Segmentierungen werden zwei Arten von Zellen gebildet, das "Blastoderm" und "Periblast" (Abb. 21.5ag). Der Embryo wird vom Blastoderm gebildet, während die Periblasten- oder Trophoblastenzellen, die zwischen Eigelb und Blastodermzellen liegen, die in der Natur synzytial sind, die Mobilisierung von Eigelbreserven unterstützen.

Es gibt beträchtliche kohäsive Kräfte zwischen sich entwickelnden Blastomeren und dem umgebenden Periblast, die für die nachfolgende morphogenetische Bewegung wichtig sind. Es wird vermutet, dass Periblast als Vermittler zwischen zwei "nicht benetzbaren" Komponenten fungiert - Blastoderm und Eigelb. Wenn der Durchmesser der Blastodermen 4/5 des Eildurchmessers beträgt, wird er in Blastula umgewandelt.

Die hemisphärische Masse der Morulazellen ragt aus dem Eigelb hervor. Die Zellen sind dann abgeflacht und erstrecken sich nach außen. Die Peripherie der Blastodisc zeichnet sich mit der Peripherie des Dotters ab. Die marginalen oder peripheren Zellen bleiben in engem Kontakt mit dem Periblast. Während die zentralen Zellen des Bodens der Blastodisc angehoben werden.

Wenn diese Zellen angehoben werden, entsteht ein Raum. Dieser Raum wird als Segmentierungskavität oder Blastocoel bezeichnet (Abb. 21.5a). Bald wird Blastocoel gut entwickelt. Die Blastula-Bildung beginnt 15 Stunden nach der Befruchtung im Stichling und 8 Stunden nach der Befruchtung in Cyprinus Carpio.

Am Ende der Segmentierung wird die Blastoscheibe radialsymmetrisch. Die Radialsymmetrie ändert sich in bilaterale Symmetrie, da die Abflachung der Zellmasse in einem Sektor ausgedrückt wird und dieser Bereich somit dicker wird.

Der dickere Sektor ist sehr wichtig, weil er embryonales Material ist und daraus ein zukünftiger Embryo entsteht, dessen mittlere Ebene zur mittleren Ebene des Embryos wird. In diesem Stadium sind auch die vorderen und hinteren Seiten des zukünftigen Embryos festgelegt. Der distale Teil des dickeren Sektors ist das prospektive hintere Ende des Embryos und sein zentraler Teil entspricht dem prospektiven vorderen Ende des Embryos.

Gastrula:

Das Auftreten von ausgeprägten primitiven Streifen auf dem Embryonalschild ist der Beginn der Gastrula. Die Gastrulation endet im Allgemeinen mit dem Verschluss der Blastopore. Nach Riley (1974) ist diese Unterscheidung willkürlich. Sowohl die Epibolie als auch die Embolie sind aktiv an der Bildung der Gastrula beteiligt.

Invagination oder Embolyse:

Es findet etwa 21-26 Stunden nach der Befruchtung statt, wobei die Zellen des dickeren Sektors an der Grenze von Zytoplasma und Eigelb eindaginieren. Dies markiert den Beginn der Gastrulation (Abb. 21.6ad). Die ursprünglich an einem Punkt beginnende Invagination erstreckt sich dann seitlich um den Rand des Blastoderms und breitet sich bald bis an die Peripherie der gesamten Blastoscheibe aus.

Die invaginierte Schicht erstreckt sich nicht über den Boden der Unterkammerhöhle, sondern beschränkt sich auf die Ränder des Blastoderms und bildet so einen herausragenden Ring, den sogenannten "Keimring" (Abb. 21.5b). Der einzige Teil, der eine weitere Invagination zeigt, ist der Bereich des Keimrings, der durch den dicken Sektor der Blastodermscheibe gebildet wird.

Sobald sich der Keimring etabliert hat, bewegt er sich in Richtung des Eidotters (Abb. 21.5b). Die Breite bleibt konstant, nimmt jedoch an Umfang zu. In Bezug auf die weitere Invagination kommt es schneller an einer Stelle vorwärts als um den Rest des Blastoderms herum, wodurch es dreieckig geformt wird (Abb. 21.5c). Der Scheitelpunkt zeigt auf den tierischen Pol des Eies.

Der Embryo verliert seine dreieckige Form und wird länger. Wenn das Blastoderm von oben gesehen wird, ist der hintere Pol ungefähr dreieckig, was dicker ist als der angrenzende Bereich. Dadurch wird der embryonale Schild stärker hervorgehoben. Das embryonale Schild wurde als embryonales und extra embryonales Gebiet unterschieden.

Der embryonale Schild besteht aus einem Epiblast von polygonalen Zellen, der von epidermischem Stratum bedeckt ist, und einer komplexen unteren Schicht, die als Entochordamesoblast bekannt ist. Dieser Entochordamesoblast ist das Analogon von Mesoderm und Endoderm. Der verdickte mittlere Teil wird zur vorchordalen Platte und Chorda, während etwas locker angeordnete Zellen Entoderm bilden.

In der extraembryonalen Region erstreckt sich zwischen dem Periblast und dem Epiblast eine durch den Keimring seitlich begrenzte, längliche Unterkeimhöhle.

Das präsumptive Mesoderm hat inzwischen eine Abdeckung zu den dorsolateralen Rändern der Blastodisc, wo es eintritt, und geht zwischen Entoderm und Ektoderm ins Innere über. Das Mesoderm wird auf beiden Seiten des medianen notochordalen Materials im sich entwickelnden Embryo angeordnet.

Notochord, Prechordalplatte und Mesoderm, die sich unterscheiden, aber mit Entochordamesoblast fortfahren, unterscheiden sich später Ektoderm und alle drei Keimschichten werden Ektoderm, Mesoderm und Entoderm unterschieden. Mit dem Fortschritt der Entwicklung Notochord werden Kuffers Vesikel und Neuralplatte unterschieden.

Epiboly:

Gleichzeitig mit dem Emboly beginnt auch das Epiboly und die Zellen überwachsen das Eigelb und wandern gleichzeitig an der Peripherie. Das Blastoderm wird abgeflacht. Die Abflachung des Blastoderms führt dazu, dass es sich über dem Eigelb ausbreitet.

Schließlich konvergiert der Rand des Blastoderms an oder in der Nähe der gegenüberliegenden Seite des Dotters, und die Öffnung wird durch die Kontraktion des Randes geschlossen. Der Rand der Blastoscheibe entspricht der Lippe der Blastopore. Später, bevor der Blastopore schließt, sieht man einen Dotterstopfen, der aus dem Blastopore herausragt (Abb. 21.5d).

Organisation von Fischembryonen:

Presumptive Bereiche können in der Wand der Gastrula abgebildet werden. Die Schicksalskarte für die Gastrula von Cyprinus carpio wurde von Verma (1971) gegeben (Abb. 21.7AF & Abb. 21.8).

Organogenese:

Etwa 27 bis 50 Stunden nach der Befruchtung schließt sich der Blastopor aufgrund weiterer Kontraktion der Lippen

Notogenese:

Die präsumptiven Notochordalzellen wandern nach innen und rollen entlang der Hinterkante des Blastoderms auf und bilden so eine feste Schnur wie die Notochordie.

Neurogenese:

Die mutmaßliche Neuralplatte sinkt in den Raum hinunter, der von den nach innen gewanderten Notochordzellen verlassen wird. Die Kanten der Neuralplatten steigen auf und verschmelzen an der Mittellinie, die einen Hohlraum "Neurocoel" einschließt. Ein hohles Rohr, wie ein Neuralrohr, wird somit direkt über der Notochord gebildet. Der vordere Teil des Neuralrohrs schwillt an und bildet das Gehirn, während der dahinterliegende Teil als solcher verbleibt und das Rückenmark bildet.

Durch die zwei konsekutiven Invaginationen im Gehirn wird in Vorder-, Mittel- und Hinterleib unterschieden. Die optischen Lappen erscheinen durch seitliches Auswachsen aus dem Vorderhirn. Die nicht segmentierten Teile des Embryos konvergieren in Richtung der Embryonalachse.

Diese Konvergenz bewirkt zusammen mit der Entwicklung des Zentralnervensystems eine Verdickung des eigentlichen Embryos, der jetzt von der Oberfläche des Eies hervorsteht, die sich ungefähr auf halber Höhe um den Umfang der Dotterkugel erstreckt.

In einigen Stunden, nach weiterer Kontraktion der Lippen, schließt sich der Blastopore 60 Stunden nach der Befruchtung im Stichling und 21 Stunden nach der Befruchtung in Cyprinus Carpio. In der Mitte des Embryos erscheinen 5-10 Teile der Somiten auf beiden Seiten des Nervenstranges ( Fig. 21.5g). Jedes Somitpaar wird von einem lateralen Mesoderm gebildet. Später bilden die Somiten den Rumpfmuskel, die Gliedmaßen und ihr Skelett.

Gleichzeitig schließt sich der Blastopore, und der gesamte Keimring verschmilzt mit dem eigentlichen Embryo, der jetzt erhöht und vom Eigelb gut abgegrenzt erscheint. Durch die Entwicklung von zentralen Hohlräumen in den Lappen werden sie zu Bläschen (Abb. 21.9ae).

Das Aussehen der Optikkapsel und des Kuffer-Vesikels entwickelte sich nach 30-stündiger Befruchtung in Cyprinus carpio. Der Kopf des Embryos wird weiter differenziert. Die optischen Vesikel werden in Optikbecher umgewandelt und die Linsen werden ebenfalls geformt. Das Gehirn entwickelt sich als mittlere Rückenfurche, die sich im vorderen und mittleren Gehirn zu einem Ventrikel erweitert, der sich dorsal öffnet.

Seitlich des Hinterhirns ist ein Paar Optikkapseln erkennbar. Ventral zum hinteren Teil des Gehirns erscheint das Perikard, obwohl das Herz noch nicht sichtbar ist. Die Anzahl der Somiten nimmt zu, Kuffers Vesikel ist jetzt ventral am hinteren Ende des Körpers sichtbar.

Herz und Schwanz entwickeln sich nach 88 Stunden Entwicklung im Stichling und 55 Stunden in Cyprinus Carpio. Zuvor bilden sich bei 70 Stunden Entwicklung die Brustflossen und der Ventrikel und das Vorderhirn schließt sich.

Schraffur:

Nach der Entwicklung der verschiedenen Organe im Embryo wird sein Körper zylindrisch und bilateral symmetrisch. Die Verbindung zwischen Körper und Dottersack verengt sich allmählich zu einem Stiel. Der Dottersack nimmt mit zunehmendem Embryo allmählich ab. Schließlich schlüpft der Embryo in eine kleine frei schwimmende Larve.

Larvenentwicklung:

Die frisch entwickelte Larve von Cyprinus carpio ist etwa 4, 5 mm lang. Dies ist gekennzeichnet durch (a) den Kopf leicht am Eigelb gebogen, (b) der Mund ist offen, aber kein Verdauungskanal, die Augen sind groß, die Brustflossen sind rudimentär und der Schwanz ist heterocercal (Abb. 21.10ae).

Eine eintägige Larve wächst auf 5, 5 mm. Der Kopf wird gerade als die vorangehende Stufe, in der der Kopf leicht gebogen ist. Die Augen werden dunkelschwarz, das Herz vergrößert sich und der Verdauungskanal wird über dem Dottersack differenziert. Der Mund wird durch die Kiefer begrenzt, aber von einer dünnen Membran bedeckt. Es werden Gill-Bögen mit rudimentären Kiemenfilamenten entwickelt, die noch nicht durch ein Operculum bedeckt sind.

In zwei Tagen öffnet sich das Larvenmaul und wird schlitzartig, durch den After öffnet sich der Verdauungskanal. In diesem Stadium beginnt die Larve mit Kiemen zu atmen und mit dem Mund zu füttern. Es gibt eine vollständige Resorption von Eigelb bei Larven im Stadium von 7 mm, die fast 4 Tage alt ist. Nach 10 Tagen nimmt die Larve die Form eines Fisches mit einem konvexen Rückenprofil an.

Fütterung, Hunger und Gewichtsveränderung der frühen Fischlarve von Tilapia sparmanii und Paralichthys oliyaceus (marine) wurden von Ishibashi (1974) untersucht. Die Inkubationszeit für Tilapia betrug 48 Stunden bei 27 ° C. Die Gesamtlänge betrug beim Schlüpfen 4, 2 mm, die Larve war inaktiv und ohne funktionellen Mund.

Nach zwei Tagen geht der Mund auf, die Schwanzflosse beginnt sich aktiv zu bewegen, und nach drei Tagen beginnt die Larve zu schwimmen. Das Gewicht nimmt nach dem Schlüpfen schnell zu. Das Gewicht am dritten Tag war 0, 65 mg schwerer als beim Schlupf.

Zu diesem Zeitpunkt begann die Larve mit der Nahrungsaufnahme, und das Gewicht von 8, 80 mg war erhöht, und am neunten Tag waren die ungefütterten Larven inaktiv und das Gewicht betrug 1, 24 mg, 25% weniger als am dritten Tag. Nur 1% der ungefütterten Larven überlebte bis zum 12. Tag.

Einflussfaktoren auf das frühe Überleben:

Licht, Sauerstoff, Temperatur und Fütterung sind einige wichtige Faktoren, die für das Überleben während der Embryonalentwicklung verantwortlich sind. Nach Pinus (1974) ist Tiulka (Culpeonella delicatula) der am häufigsten vorkommende Fisch des Azon-Meeres mit Fängen, die 40-50% des gesamten angelandeten Fisches aus diesem Meer ausmachen. Er fand optimale Bedingungen für das Überleben oder die Eier dieses Fisches, wenn die Temperatur 15-18 ° C erreicht.

Biochemie von Eiern von Fischen:

Die Fischeier mit ihrem relativ voluminösen Eigelb sind das schwierigste Thema für die chemische Analyse. Informationen wurden aus den Techniken der Zytochemie und verfeinerten modernen Verfahren der Elektrophorese und Chromatographie eingeholt. Die Analyse von 100 mg Ei von Salmo irideus ist wie folgt.

Young und Inman (1938) fanden 0, 4% Asche und etwa 4, 38% flüchtiges Material. Arginin, Histidin und Lysin waren jedoch in einem Verhältnis von 4: 1: 3 vorhanden. Hayes (1930) fand im Lachseier sehr wenig Glukose, nur 0, 049 mg pro 100 mg Ei. Der Rest des Kohlenhydrats ist wahrscheinlich an Protein gebunden.

Aminosäurezusammensetzung von Salmo gairdneri egg während der Entwicklung:

Enzym in Fischen:

Das Chorion enthält ein Enzym, das als Chorionase bekannt ist. Das Chorion widersteht auch der Verdauung durch Trypsin und Pepsin, es besitzt Pseudo-Keratin. Die Aushärtung des Chorions beruht auf dem Enzym in der Perivitellinflüssigkeit. Ca ⁺⁺ wirkt sich eher auf das Enzym als auf das Chorion selbst aus.

Die Härtung erfolgte durch Oxidation von SH zu SS-Gruppen mittels Aldehyden, die durch Polysaccharid mit Glykolgruppen hergestellt wurden. Das Schlupfenzym funktioniert am besten unter alkalischen Bedingungen, pH 7, 2-9, 6 und einer Temperatur von 14-20 ° C.

Acetylcholinesterase, das mit der nervösen Stimulation der Muskeln verbundene Enzym, wurde am 10. Tag nach der Befruchtung in Salmo gairdneri-Eiern nachgewiesen. Im Augenstadium fällt die Aktivitätssteigerung fast mit der Entwicklung des erregbaren Gewebes zusammen. Ornithin-Transcarbamylase und Arginase der fünf OU-Zyklusenzyme wurden im Ei von Salmo berichtet, die Stickstoff ausscheiden konnten.

Stoffwechsel von stickstoffhaltigen Abfällen bei Fischen:

Metabolismus und stickstoffhaltige Abfälle in den Eiern und Alevins der Regenbogenforelle, Salmo gairdneri, wurden von Rice and Stoke (1974) untersucht. Ammoniak, Harnstoff, Harnsäure und Gesamtprotein sowie freies Arginin wurden in Eiern in Alevines nachgewiesen.

Demnach wurden in Alevines Ammoniak und Konzentrationen durch Schlupf und die höchsten Konzentrationen festgestellt. Der Ammoniakspiegel steigt in den ersten Tagen an und fällt dann ab, wenn das Eigelb absorbiert wird. Die Harnsäurekonzentration veränderte sich während der Entwicklung nicht dramatisch, aber die Konzentration vor und nach der Schlupfphase war niedriger als kurz nach der Befruchtung und wenn das Eigelb fast absorbiert war.

Harnstoff und freies Arginin nahmen beide zu, während sich der sich entwickelnde Embryo noch im Chorion befand. Die Höchstkonzentration an Harnstoff und Arginin trat kurz nach dem Schlüpfen auf, danach sank jedoch die Konzentration beider Verbindungen. Die Proteinkonzentrationen waren während der ersten 25 Tage der Embryonalentwicklung relativ konstant und gingen danach stetig zurück.

Die Produktion von Ammoniak im Lachsembryo wird erwartet, obwohl der Fettstoffwechsel die vorherrschende Energiequelle ist. Die Proteine ​​im Eigelb werden in Aminosäuren zerlegt. Bevor sie im Embryo zu Proteinen erneut synthetisiert werden, steht ein Aminosäure-Pool für den Katabolismus zur Verfügung.

Die meisten Aminosäuren werden jedoch eher zu Proteinen synthetisiert als katabolisiert, da die gesamten Eiweißwerte bis zum Tag 21 stabil bleiben, wonach der Katabolismus zu einer Abnahme des Gesamtproteins führt.

Harnstoff schien synthetisiert zu werden, wenn aus Arginin Proteine ​​aus Eigelb abgebaut wurden. Rice and Stoke (1974) stützte die Hypothese, dass OU-Zyklusenzyme Zwischenprodukte in anderen Stoffwechselwegen bilden können.

Abnormale Entwicklung:

Swarup (1958, 1959 a, b, c, d) fand Zwillingsformen, wenn das frisch befruchtete Ei von G. aculeatus Wärme und Kälte ausgesetzt wurde (32, 5 bis 37 ° C und 0 bis 1/2 ° C). Die Fehlbildung umfasst Synophthalmie, Monophthalmie, Mikrophthalmie und Anophthalmie. Es treten nicht nur die oben genannten Veränderungen auf, sondern es treten auch Anomalien in der Blastodisc aufgrund von hohen und niedrigen Temperaturen auf.